English flag   
Foto for infrastruktur

Avdeling for komparativ medisin (AKM) er en kjernefasilitet og en fellesressurs for eksperimentell forskning ved Det helsevitenskapelige fakultet.

AKM kontrollerer- og gir veiledning knyttet til god dyrevelferd og etisk forsvarlig bruk av dyr i medisinsk forskning. Vi bidrar til at det oppnås reproduserbare og pålitelige forskningsresultater samt legger forholdene til rette for god forskning i et trygt arbeidsmiljø.


Januar 2023 rektor har pålagt Det helsevitenskapelige fakultet å lage en strategisk plan for fremtidig forskning- og utdanningsbasert aktivitet ved alle AKM sine fasiliteter; AKM 1, 2 og 3. Dealine for levering inn av aktivitetsplanen er 27 januar 2023. Det er for alle å delta å levere inn informasjonsskjema til dette: informasjons-skjema

Januar 2023 påbegynnes testdrift av AKM 2, og de siste byggeprosjekterne er på gang å avsluttes. For en full åpning må først al byg avsluttes, funksjonstest utføres og etterpå må avdelingen godkjennes av Mattilsynet. 

Desember 2022 AKM sin hjemmeside er under ombygning og nye tiltak vil gjøres for 2023, herunder online skjemaer skal benyttes for bestilling av dyr, teknisk arbeid samt uttak av dyr. 


Finn siste nyt om gjenåpning av AKM 2 her: nyheter/AKM.



Det er startet et nasjonalt samarbeide for forsøksdyrkurser mellom universiteterne i Oslo, Bergen, Trondheim og Tromsø. Derfor er endringer vedrørende påmelding og opptakk implementert og pr. 2023 vil alle skulle registreres via Universitetet i Bergen (UiB). For studerende på UiT vil den praktiske del av kurset fortsatt avholdes på Avdeling for komparativ medisin i Tromsø, UiT.

For mer informasjon og påmeldingsfrister, se her: Forsøksdyrskurs.



The novel AKM building is equipped with up-to-date zebrafish facilities.

Zebrafish is a well-known model system for early vertebrate embryo development, and its overall sequence similarity with humans and conserved catalytic sites and functions for proteins involved in e.g drug metabolism, signaling pathways and transcriptional regulation, makes it suitable as a model in the medical field, to study human diseases (1) as well in animal physiology and aquatic toxicology. There are several advantages using zebrafish as a model system: it is a small and robust fish, the generation time is short, the number of offsprings are high per mating, and fertilization is external so live embryos are accessible to manipulation and can be monitored through all developmental stages. In addition, advanced molecular techniques can be used to manipulate the genome and make transgenic fish (2) or isogenic (clonal) lines (3). Advanced methods and equipment make it possible to perform various molecular analyses as well as studying e.g behavior, and last but not least the space and costs required compared to other model systems are small. Several zebrafish models for human diseases exists, and especially interesting for research at the Faculty of Health Sciences could be mentioned zf models for cardiovascular disease (4), autophagy (5), metabolism (6), cancer (7), neuroscience (8), drug screening and drug development (9).  For research done at the Faculty of Biosciences, Fisheries and Economics it is relevant to mention that zebrafish provides a range of well-developed molecular genetic techniques which are not available for other ecologically and commercially relevant fish species by facilitating some in-depth analyses using a powerful and versatile fish model. This could allow studying different genetic, immunological and physiological processes like genetic mapping and identification of quantitative trait loci (3), and testing of bioactive compounds with therapeutic potential (10). Within aquatic toxicology, the model is used among others to determine the mechanisms of toxicity of contaminants (11), generate toxicity data for regulatory ecotoxicology based on standardized tests (12) and allows to study epigenetic inheritance through multi- and trans-generational experiments (13).

In Norway zebrafish research is conducted at the Zebrafish core facility at NCMM in Oslo, the Norwegian Zebrafish Platform at NMBU in Ås, the Zebrafish facility at the University of Bergen, the Kavli Institute for Systems Neuroscience at NTNU and at the Nord University in Bodø.

References:
1. Choi TY, Choi TI, Lee YR, Choe SK, Kim CH. Zebrafish as an animal model for biomedical research. Exp Mol Med. 2021 Mar;53(3):310-317.
2. Choe CP, Choi SY, Kee Y, Kim MJ, Kim SH, Lee Y, Park HC, Ro H. Transgenic fluorescent zebrafish lines that have revolutionized biomedical research. Lab Anim Res. 2021 Sep 8;37(1):26.
3. Mizgirev I & Revskoy S. Generation of clonal zebrafish lines and transplantable hepatic tumors. Nat Protoc. 2010 Feb; 5(3): 383-394.
4. Hu B, Lelek S, Spanjaard B, El-Sammak H, Simões MG, Mintcheva J, Aliee H, Schäfer R, Meyer AM, Theis F, Stainier DYR, Panáková D, Junker JP. Origin and function of activated fibroblast states during zebrafish heart regeneration. Nat Genet. 2022 Aug;54(8):1227-1237.
5. Zhou C, Liang Y, Zhou L, Yan Y, Liu N, Zhang R, Huang Y, Wang M, Tang Y, Ali DW, Wang Y, Michalak M, Chen XZ, Tang J. TSPAN1 promotes autophagy flux and mediates cooperation between WNT-CTNNB1 signaling and autophagy via the MIR454-FAM83A-TSPAN1 axis in pancreatic cancer. Autophagy. 2021 Oct;17(10):3175-3195.
6. Banerji R, Huynh C, Figueroa F, Dinday MT, Baraban SC, Patel M. Enhancing glucose metabolism via gluconeogenesis is therapeutic in a zebrafish model of Dravet syndrome. Brain Commun. 2021 Jan 25;3(1)
7. Wang Q, Wang W, Pan W, Lv X, Zhang L, Zheng K, Tian F, Xu C. Case Report: Two Patients With EGFR Exon 20 Insertion Mutanted Non-Small Cell Lung Cancer Precision Treatment Using Patient-Derived Xenografts in Zebrafish Embryos. Front Oncol. 2022 Jul 20;12:884798.
8. Ochenkowska K, Herold A, Samarut É. Zebrafish Is a Powerful Tool for Precision Medicine Approaches to Neurological Disorders. Front Mol Neurosci. 2022 Jul 6;15:944693.
9. Patton EE, Zon LI, Langenau DM. Zebrafish disease models in drug discovery: from preclinical modelling to clinical trials. Nat Rev Drug Discov. 2021 Aug;20(8):611-628.
10. Hoeksma, J., Misset, T., Wever, C. et al. A new perspective on fungal metabolites: identification of bioactive compounds from fungi using zebrafish embryogenesis as read-out. Sci Rep. 2019 Nov; 9: 17546. doi.org/10.1038/s41598-019-54127- 9
11. Lee Y-L, Shih Y-S, Chen Z-Y, Cheng F-Y, Lu J-Y, Wu Y-H, Wang Y-J. 2022. Toxic Effects and Mechanisms of Silver and Zinc Oxide Nanoparticles on Zebrafish Embryos in Aquatic Ecosystems. Nanomaterials-basel 12(4): 717. doi: 10.3390/nano12040717
12. Krzykwa JC, Saeid A, Jeffries MKS. 2019. Identifying sublethal endpoints for evaluating neurotoxic compounds utilizing the fish embryo toxicity test. Ecotox Environ Safe 170: 521–529. doi: 10.1016/j.ecoenv.2018.11.118
13. Bautista NM, Crespel A, Crossley J, Padilla P, Burggren W. 2020. Parental transgenerational epigenetic inheritance related to dietary crude oil exposure in Danio rerio. J Exp Biol 223(16): jeb222224. doi: 10.1242/jeb.222224


New facilities have been built at the Section of comparative medicine (AKM) where it is possible to conduct projects and research based on infectious disease models. The unit has professional laboratories and housing facilities for rodents (mice, rats) both wildtype and transgenic and are classified biosafety level 2.

Biosafety level 2 (BSL-2) covers all laboratories working with agents associated with human disease that poses a moderate health hazard. Examples of research conducted at AKM are work with human and mouse cytomegalovirus and the unit have potential for supporting many more future projects.

Additionally, the unit can be used as a quarantine station when receiving animals from non-commercial suppliers as these animals are not considered specific pathogen free animals (SPF).



Søknad om dyreforsøk

Alle som skal gjøre forsøk med dyr må ha myndighetenes tillatelse og må ha bestått kurs i forsøksdyrlære godkjent av Mattilsynet. Det må søkes tillatelse for hvert enkelt forsøk som planlegges gjennomført.
Det finnes to typer av dyreforsøk

1. In vivo (forsøk/prosedyre utført på levendes dyr)
2. In vitro (laboratorie forsøk)

Alle søknader om å utføre forsøk med dyr (in vivo) skal leveres elektronisk via FOTS. For mer informasjon se under adgang og for å bli registrert i FOTS må kursbevis og kompetanse-dokumentasjon legges ved her: registrering i FOTS
Søknad om forsøk bør sendes inn i god tid før planlagt oppstart. 


Søknad om in vitro prosjekt

In vitro prosjekter blir godkjennt lokalt hos person med særskilt kontroll ansvar (PMSK) på respektive universiteter. For å få en søknad godkjent må leveres inn utfylt og detaljert søknadsskjema, finn også dokumentet under skjemaer.

Se mer informasjon hos Mattilsynet
Direkt link til inlogging i FOTS